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“F4，可溶蛋白。
F3，微囊泡和外泌体层，目标S因子在此。
F2，细胞器。
F1，底层膜碎片和大分子复合物，W因子结合于此。”
他快速指点着管壁。
斯坎儿用不同的吸管，将F1和F3级分分别吸取到标记好的试管中。
“F1需要立刻处理，W因子不稳定。
F3低温保存。”
“嗯。”
扉间拿起F1试管，又拿起另一支装有淡紫液体的试管，“这是从斑细胞上清初步提纯的I因子，热敏感蛋白酶。
按之前摸索的条件混合，4度振荡。
同时准备泉奈的淋巴细胞做毒性测试。”
斯坎儿开始混合F1与I因子，同时处理另一边的细胞培养板。
等待后，显微镜观察。
直接添加F1的细胞大部分死亡木化，而添加了“F1+I”
混合物的细胞多数形态正常。
“毒性中和通过。”
斯坎儿报告。
“进行功效测试。”
扉间走向另一个培养箱，“用那批建立应激损伤的模型细胞。”
斯坎儿将低温保存的F3级分取出，与通过毒性测试的中和混合物在特定缓冲液中混合，然后加入那些预先用氧化剂和电脉冲损伤的细胞中。
数小时后的检测数据显示，损伤细胞的活性显著恢复，内部氧化损伤指标下降。
“细胞活性恢复率达标，线粒体功能指标改善。”
斯坎儿看着数据说。
扉间走到主台，拿起一支特制水晶安瓿。
斯坎儿将最后一点混合液转入其中。
不足0.5毫升的液体，在灯光下呈现清澈剔透的淡金色，内里有稳定微光流转。
“原理验证通过了。”
千手扉间将安瓿放回支架，“但这0.5毫升，是从数亿细胞中分离提纯的极限产量。
要实际应用，我们需要一套能稳定、自动生产‘RY-PLEX’的系统。”
他走到实验室中央预留的区域。
“下一步，是建立一套封闭的体外生产体系，一个模拟体内微环境的‘共生培养系统’。
让柱间和斑的细胞在受控条件下自行生长、分泌、反应，我们定期收取终产物即可。”
他展开设计图，并指向旁边的实验记录以明确术语。
“柱间细胞裂解物经超离分离出四个级分。
其中，F1级分（膜碎片）含导致木化的剧毒成分（W因子）。
F3级分（微囊泡）含具修复潜力的有效成分（S因子）。”
“斑细胞的分泌物中，则含有能特异性降解W因子的I因子（蛋白酶）。”
“我们得到的‘RY-PLEXⅠ型浓缩液’，其核心就是利用I因子安全中和W因子毒性，从而使得S因子能够安全、稳定地发挥修复效用。”
“明确这点，再看设计。”
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